Expresión génica en peces a causa de infecciones causadas por Aeromonas spp.

R. Beaz-Hidalgo, J. L. Romalde, M. J. Figueras

Resumen


Las especies del genero Aeromonas son bacterias autoctonas del medio acuatico capaces de producir septicemias y enfermedades hemorragicas y ulcerativas en peces, como la furunculosis, causada por Aeromonas salmonicida, que resultan en mortalidades masivas y grandes perdidas economicas en el sector de la acuicultura. La busqueda e identificacion de genes que participan activamente en el sistema inmune del pez nos permite reconocer marcadores para poblaciones de peces resistentes a infecciones bacterianas, asi como nuevas dianas para el desarrollo de vacunas. La informacion sobre la respuesta inmune de peces (principalmente de salmonidos y peces planos) frente a infecciones causadas por especies del genero Aeromonas es muy escasa, basandose principalmente en estudios genomicos mediante la secuenciacion masiva de pequenas secuencias denominadas marcadores de secuencia expresada (acronimo del ingles expressed sequence tags, EST) y uso de chips (o microarrays) de ADN. Algunos autores han investigado los genes involucrados en el sistema inmune de peces tras infecciones experimentales con los patogenos A. salmonicida y A. hydrophila, asi como en respuesta a la vacunacion intraperitoneal y a sus efectos secundarios adversos como es la formacion de granulomas. A lo largo de este articulo se analizan y se discuten estos estudios resaltando la importancia de identificar los genes implicados en la resistencia a infecciones microbianas lo que significaria un avance importante en la busqueda de poblaciones resistentes, en la mejora genetica de reproductores, asi como en el desarrollo de nuevos metodos preventivos que mejoren la supervivencia y salud de los peces.


Texto completo:

PDF

Referencias


Austin B. y Austin D.A. (2007). Bacterial fish pathogens, disease of farmed and wild fish (4th edition) Springer-Praxis, ISBN 978-1-4020-6068-7, Chichester, UK.

Bernoth E.M., Ellis A., Midtlyng P., Olivier G. y Smith P. (1997). Furunculosis Multidisciplinary Fish Disease Research (1st edition), Academic Press, ISBN 0-12-093040-4.

Beaz Hidalgo R. y Figueras M.J. (2012). Molecular Detection and Characterization of Furunculosis and Other Aeromonas Fish Infections, Health and Environment in Aquaculture, Dr. Edmir Carvalho (Ed.), ISBN: 978-953-51-0497-1, InTech, Disponible en: http://www.intechopen.com/books/healthand-environment-in-aquaculture/updatedinformation-of-aeromonas-infections-andfurunculosis-derived-from-molecular-methods

Browne M.J., Feng C.Y., Booth V. y Rise M.L. (2011). Characterization and expression studies of Gaduscidin-1 and Gaduscidin-2; paralogous antimicrobial peptide-like transcripts from Atlantic cod (Gadus morhua). Developmental and Comparative Immunology 35: 399-408.

Ewart K.V., Belanger J.C., Williams J., Karakach T., Penny S., Tsoi S.C., Richards R.C. y Douglas S.E. (2005). Identification of genes differentially expressed in Atlantic salmon (Salmo salar) in response to infection by Aeromonas salmonicida using cDNA microarray technology. Developmental and Comparative Immunology 29: 333-347.

Ewart K., Williams J., Richards R.C., Gallant J.W., Melville K. y Douglas S.E. (2008). The early response of Atlantic salmon (Salmo salar) macrophages exposed in vitro to Aeromonas salmonicida cultured in broth and in fish. Developmental and Comparative Immunology 32: 380-390.

Feng C.Y., Johnson S.C., Hori T.S., Rise M., Hall J.R., Gamperl A.K., Hubert S., Kimball J., Bowman S. y Rise M.L. (2009). Identification and analysis of differentially expressed genes in immune tissues of Atlantic cod stimulated with formalin-killed, atypical Aeromonas salmonicida. Physiological Genomics 37: 149-63.

Feng C.Y. y Rise M.L. (2010). Characterization and expression analyses of anti-apoptotic Bcl-2-like genes NR-13, Mcl-1, Bcl-X1, and Bcl-X2 in Atlantic cod (Gadus morhua). Molecular Immunology 47: 763-84.

Figueras, M.J. Beaz-Hidalgo R. y Paredes K. (2011). Furunculosis y otras infecciones producidas por Aeromonas. En Enfermedades infecciosas del cultivo de Salmonidos en Chile y el Mundo. Avendano-Herrera, R. (ed). Niva Chile S.A. Chile, pp. 285-374.

Gudmundsdottir B.K. y Bjornsdottir B. (2007). Vaccination against atypical furunculosis and winter ulcer disease of fish. Vaccine 25: 5512-5523.

Magnadottir B. (2010). Immunological control of fish diseases. Marine Biotechnology 12: 361-379.

Martin S.A., Blaney S.C., Houlihan D.F. y Secombes C.J. (2006). Transcriptome response following administration of a live bacterial vaccine in Atlantic salmon (Salmo salar). Molecular Immunology 43: 1900-1911.

Millan A., Gomez-Tato A., Fernandez C., Pardo B.G., Alvarez-Dios J.A., Calaza M., Bouza C., Vazquez M., Cabaleiro S. y Martinez P. (2010). Design and performance of a turbot (Scophthalmus maximus) oligomicroarray based on ESTs from immune tissues. Marine Biotechnology: 12, 452-65.

Mutoloki S., Cooper G.A., Marjara I.S., Koop B.F. y Evensen O. (2010). High gene expression of inflammatory markers and IL-17A correlates with severity of injection site reactions of Atlantic salmon vaccinated with oil-adjuvanted vaccines. BMC Genomics 11: 336.

Noga E.J. (2010). Fish Diseases (2nd edition) Willey-Blackwell, ISBN 978-0-8138-0697-6, Singapore.

Pardo B.G., Fernandez C., Millan A., Bouza C., Vazquez-Lopez A., Vera M., Alvarez-Dios J.A., Calaza M., Gomez-Tato A., Vazquez M., Cabaleiro S., Magarinos B., Lemos M.L., Leiro J.M. y Martinez P. (2008). Expressed sequence tags (ESTs) from immune tissues of turbot (Scophthalmus maximus) challenged with pathogens. BMC Veterinary Research 4: 37.

Park K.C., Osborne J.A., Tsoi S.C., Brown L.L. y Johnson S.C. (2005). Expressed sequence tags analysis of Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus) liver, kidney and spleen tissues following vaccination against Vibrio anguillarum and Aeromonas salmonicida. Fish and Shellfish Immunology 18: 393-415.

Rise M.L., von Schalburg K.R., Brown G.D., Mawer M.A., Devlin R.H., Kuipers N., Busby M., Beetz-Sargent M., Alberto R., Gibbs A.R., Hunt P., Shukin R., Zeznik J.A., Nelson C., Jones S.R., Smailus D.E., Jones S.J., Schein J.E., Marra M.A., Butterfield Y.S., Stott J.M., Ng S.H., Davidson W.S. y Koop B.F. (2004). Development and application of a salmonid EST database and cDNA microarray: data mining and interspecific hybridization characteristics. Genome Research 14: 478-490.

Sahoo P.K., Rauta P.R., Mohanty B.R., Mahapatra K.D., Saha J.N., Rye M.y Eknath A.E. (2011). Selection for improved resistance to Aeromonas hydrophila in Indian major carp Labeo rohita, Survival and innate immune responses in first generation of resistant and susceptible lines. Fish and Shellfish Immunology 31: 432-438.

Skugor S., Jorgensen S.M., Gjerde B. y Krasnov A. (2009). Hepatic gene expression profiling reveals protective responses in Atlantic salmon vaccinated against furunculosis. BMC Genomics 10: 503.

Tsoi S.C., Ewart K.V., Penny S., Melville K., Liebscher R.S., Brown L.L. y Douglas S.E. (2004). Identification of immune-relevant genes from atlantic salmon using suppression subtractive hybridization. Marine Biotechnology 6: 199-214.

von Schalburg K.R., Rise M.L., Cooper G.A., Brown G.D., Gibbs A.R., Nelson C.C., Davidson W.S. y Koop B.F. (2005). Fish and chips: various methodologies demonstrate utility of a 16,006-gene salmonid microarray. BMC Genomics 6: 126.


Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.


Copyright (c) 2016 Revista AquaTIC