Acumulación, toxicidad y teratogénesis provocada por presencia de arsénico en aguas en el pez cebra (Danio rerio)

Francisco Prieto García, Olvieria Araceli Báez Ramírez, Willians Scoot, Juan C. Gaytán Oyarzún, Armida Zúñiga Estrada

Resumen


Fueron estudiados los daños teratogénicos y la inducción de micronúcleos en células branquiales de peces cebra (Danio rerio) mantenidos en aguas bicarbonatadas cálcico magnésicas de un pozo de referencia y del pozo Zimapán 5, el último con un contenido de arsénico que varía de 0,395 a 0,630 ppm. Para el estudio de genotoxicidad los ejemplares fueron estudiados durante 180 días en tres tratamientos: en agua del pozo de referencia (control negativo), en el agua de referencia adicionada con 5 mg As (V)/L (control positivo), y en el agua del pozo Zimapán 5, con 65 especimenes por lote. En aguas se obtuvo una disminución de la concentración de As con el tiempo, mientras que en pescados hubo un incremento. Después de 30 días hubo una disminución de As en el agua del control positivo de 1 092,65 ppb (36,42 ppb/día) mientras en pescados hubo un incremento de 523,81 ppb (17,46 ppb/día). Para el agua del pozo Zimapán 5 hubo una disminución de 211,40 ppb (7,04 ppb/día), y en pescados hubo un incremento de 74,73 ppb (2,49 ppb/día). En relación a la frecuencia de inducción de micronúcleos en células branquiales, al final de los 180 días en el control negativo hubo una generación espontánea de 0,8 micronúcleos/1 000 células, en el control positivo hubo una frecuencia de inducción de micronúcleos 163,5 veces mayor que en el control negativo, mientras que en los peces expuestos al agua del pozo Zimapán 5 fue 56,25 veces mayor con respecto al mismo. Estos resultados demuestran la genotoxicidad del As en Danio rerio. Para el estudio de teratogénesis, se colocó una hembra y un macho en apareamiento en las mismas condiciones de los tratamientos (negativo, positivo y Zimapán 5), obteniendo que a mayor concentración de As en el agua mayor porcentaje de huevos no viables y óvulos, menor porcentaje de huevos viables y de eclosión, mayor porcentaje de alevines recién eclosionados y juveniles con malformaciones, y menor porcentaje de juveniles sobrevivientes.


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Referencias


Albert, L.A. (1997). Introducción a la toxicología ambiental. Centro Panamericano de Ecología Humana y Salud, División de Salud y Ambiente, Organización Panamericana de la Salud, Organización Mundial de la Salud y Secretaría de Ecología. Metepec, México

American Public Health Association (APHA), American Water Works Association (AWWA) and Water Environment Federation (WEF) (1989). Standard methods for the examination of water and wastewater (20th ed.)

Baez Ramírez, O.A. (2001). Toxicidad del arsénico de fuentes subterráneas naturales de agua potable y presa Fernando Hirirart Balderrama de Zimapán, Hgo. en Oreochromis niloticus. Tesis de maestría. Instituto Politécnico Nacional

Báez Ramírez, O.A. y F. Prieto García. (2004). Bioacumulación y daños genotóxicos en pez cebra (Danio rerio) por arsénico en aguas de Zimapán, Hidalgo, México. Ensayos en cortos plazos. Revista AquaTIC, 21:62-70. Disponible en URL: http://www.revistaaquatic.com

Barbazuk, W.B., I. Korf, C. Kadavi, J. Heyen, S. Tate, E. Wun, J.A. Bedell, J.D. McPherson y S.L. Johnson. (2000). The synthenic relationship of the zebrafish and human genomes. Genome Research 10:1351-1358

Basu, A., J., Mahata, A.K. Roy, J.N. Sarkar, G. Poddar, A.K. Nandy, P.K. Sarkar, P.K. Dutta, A. Banerjee, M. Das, K. Ray, S. Roychaudhury, A.T. Natarajan, R. Nilsson y A.K. Giri, (2002). Enhanced frequency of micronuclei in individuals exposed to arsenic through drinking water in West Bengal, India. Mutation Research, 516, 29-40.

Bodammer, J.E. (1993). The teratological and pathological effects of contaminants on embryonic and larval fishes exposed as embryos: a brief review. American Fisheries Society Simposium, 14: 77-84.

Burkhart, J.G. (2000). Fishing for mutations. Nature Biotechnology 18:21

Cavas, T. y S. Ergene-Gözükara. (2003). Micronuclei, nuclear lesions and interphase silver-stained nucleolar organizer regions (AgNORs) as cyto-genotoxicity indicators in Oreochromis niloticus exposed to textile mill effluent. Mutation Research, 538, 81-91.

Coll, J.M. (2001). El transposon SB de salmonidos como vector para transferencia de genes en vertebrados. Investigaciones Agrarias. En prensa

Del Razo, L.M., M.A. Arellano y M.E. Cebrián. (1990). The oxidation states of arsenic in wellwater from a chronic arsenicism area of northern Mexico. Environ. Pollut., 64:143-153

Dooley, K. y L.I. Zon. (2000). Zebrafish: a model system for the study of human disease. Current Opinion Genetics Development 10:252-256

Ehling, U.H. (1991). Genetic risk assesment. Ann. Rev. Genet. 25:218-224

Gaiano, N. y N. Hopkins. (1996). Insertional mutagenensis and rapid cloning of essential genes in zebrafish. Nature, 383:829-832

Guzmán, D.P. (1997). Evaluación de la frecuencia de micronúcleos en células epiteliales como prueba para detectar exposición crónica a arsénico. Tesis para obtener el grado de Maestría en Ciencias (Biología celular). UNAM, México, D.F., p. 5-6

Hackett, P.B. y M.C. Alvarez. (2000). The molecular genetics of transgenic fish. Recent advances in Marine Biotechnology. M. Fingerman y R. Nagabhushanam. Aquaculture. part B Fishes, 4:77-145

Hulka, B.S. (1990). Overview of biological markers. En: Biological markers in epidemiology. B. Hulka, T. Wilcolsky y J. Griffith. New York. Oxford University Press. 1-15

Ivics, Z., Z. Izsvak, A. Minter y P.B. Hackett. (1996). Identification of functional domains and evolution of Tc1-like transposable elements. Proceedings National Academy Sciences USA 93:5008-5013

Izsvak, Z., Z. Ivics y P.B. Hackett. (1997). Repetitive elements and their genetic applications in zebrafish. Biochemical Cell Biology 75:507-523

Joardar, M. y A. Sharma. (1990). Comparison of clastogenicity of inorganic manganese administered in cationic and anionic forms in vivo. Mutation Research, 240, 159-163.

Kapka, L., D. Anderson, M. Kruszewski, E. Siwinska, T. Oldak y D. Mielzynska. (2004). DNA damage in children exposed to lead. Gliwickie Spotkania Naukowe, 19-20, November.

Kotsanis, N. y G.J. Iliopoulou. (1999). Arsenic induced liver hyperplasia and kidney fibrosis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) by microinjection technique: a sensitive animal bioassay for environmental metal-toxicity. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 62:169-178

Lam, W.L., T.S. Lee y W. Gilbert. (1996). Active transposition in zebrafish. Proceedings National Academy Sciences USA 93:10870- 10875

Lenihan, J. y W.W. Fletcher. (1977). The chemical environment. Vol. 6. Environment and man. Blackie Glasgow and London

McGeachy, S.M. y D.G. Dixon. (1992). Whole body arsenic concentrations in rainbow trout during acute exposure to arsenate. Ecotoxicology and environmental safety 24:301-308

Metelev, V.V., A.I. Kanaev y N.G. Dzasokhova. (1983). Water toxicology. Amerind Publishing Co. New Delhí

Naqvi, S.M. y C.T. Flagge. (1990). Chronic effects of arsenic on american red crayfish, Procambarus clarkii, exposed to monosodium methanearsonate (MSMA) herbicide. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 45:101-106

Naqvi, S.M., C.T. Flagge y R.L. Hawkins. (1990). Arsenic uptake and depuration by red crayfish, Procambarus clarkii, exposed to various concentrations of monosodium methanearsonate (MSMA) herbicide. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 45:94-100

Navarro, M., H. López y M.C. López. (1992). Determination of arsenic in fish by hydride generation atomic absortion spectrometry. Journal of Analytical Toxicology, 16(5-6):169-171

Nölte, J. (1991). Continuous-flow hydride generation combined with conventional nebulization for ICP-AES determination. Atomic Spectroscopy, 12(6):199-203

Oladimeji, A.A., S.U. Qadri y A.S.W. de Freitas. (1984). Long-term effects of arsenic accumulation in rainbow trout, Salmo gairdneri. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 32:732-741

Secretaría de Salud. 2000. Norma oficial mexicana NOM-127-SSA1-1994 Agua para uso y consumo humano (potable). México

Schmitt, C.J. y W.G. Brumbaug. (1990). National contaminant biomonitoring program: concentrations of arsenic, cadmium, coppper, lead, mercury, selenium and zinc in U.S. freshwater fish, 1976-1984. Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 19:731-747

Tamaki, S. y W.T. Frankenberger. Environmental Biochemistry of Arsenic. Reviews of Environmental Contamination and Toxicology, 124:79-109


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